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3.4 测定步骤
3.4.1 提取
称取样品20.0g,装入脂肪提取器或心形瓶式脂肪提取器中的滤纸筒内,加入丙酮-石油醚(2+8)混合液150mL,在水浴中提取6h(回流速度每小时8~10次),在原提取器或心形瓶内将提取液蒸发至约80mL。
3.4.2 净化
A法:将提取液转移至250mL分液漏斗中,以约15mL石油醚分三次洗涤提取瓶,洗液并入分液漏斗内。1慢慢地加入浓硫酸(提取液与浓硫酸体积比为10+1),摇动0.5min静置分层,弃去下层酸液。如一上重复净化直至酸液呈无色或淡黄色为止。然后,分两次每次用100mL硫酸钠水溶液洗涤净化液,弃去下层。净化液通过内盛5g无水硫酸钠的筒形漏斗脱水,需要时进行浓缩或稀释。
B法:向心形瓶中的提取液内加入浓硫酸(提取液与浓硫酸体积比为10+1),轻轻摇动1~2次,静置分层,用抽吸管将下层酸液缓慢抽除。再如上重复净化1~3次(净化至下层酸液呈无色或淡黄色为止),每次振摇0.5min,静置分层后抽除下层溶液,用硫酸钠水溶液洗涤两次(每次100mL),抽除水层,在旋转蒸发器上将净化液浓缩至合适的体积(约20mL)。
注:A法和B法可任选一种。
3.4.3 测定
3.4.3.1 色谱条件
3.4.3.1.1 色谱柱I:
a.玻璃柱:2m×2.5mm(内径)。一填充物为2.5%(m/m)OV-17和3.3%(m/m)QF-1混合液涂于Chromosorb WAW-DMCS(80筛目);
b.载气;高纯氮,纯度>99.99%,40mL/min;
c.柱温:192℃;
d.进样口温度,230℃;
e.检测器温度,210℃。
3.4.3.12 色谱柱Ⅱ:
a.玻璃牲:2m×3mm(内径)。填充物为1.32%(m/m)OV-17和4.68 %(m/m)QF-1涂于Diatomite C AW-DMCS(80~90筛目)。
c.柱温:190℃;
d,进样口温度:250℃;
e.检测器温度:270℃。
3.4.3.2 色谱侧定
视样品中农药组分含量多少,将净化液稀释或浓缩,井定量加入内标物标准工作溶液。将此样液和与样液中农药浓度最接近的混合农药标准工作溶液,选用色谱柱I或Ⅱ,进行气相色谱测定。
3.4.4 空白试验
按3.4测定步骤进行试剂空白试验。
3.4.5 结果计算
用色谱数据处理机按适当程序计算各种农药残留量,也可按式(1)分别计算:
式中:h—样液中农药的峰高,mm;
h'—标准工作溶液中农药的峰高,mm;
h'i—标准工作溶液中内标物的峰高,mm;
hi—样液中内标物的峰高,mm;
c'—标准工作溶液中农药的浓度,ng/uL;
c'i—标准工作溶液中内标物的浓度,ng/uL;
m'—样液中加入内标物量,ug;
m—样品量,g。
注:计算结果斋将空白值扣除。
文章来源:《食品化妆品检验卷农药残留检测方法上》
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