北京普天同创生物科技有限公司
3.4 测定步骤
3.4.1 提取
称取约10g试样(精确至0.1g),置于200 mL烧杯中。加入20 mL水,用搅棒拌匀,放置2h。加入100 mL丙酮于上述烧杯中,搅拌3 min,用上铺1 cm厚硅藻土的布氏漏斗抽滤。将漏斗上的残渣全部移回烧杯中,再加入100 mL丙酮,同上操作一次。用少量丙酮洗涤滤垫。合并滤液于300 mL圆底烧瓶中,于40℃的旋转蒸发器上浓缩至约50 mL。
3.4.2 净化
于上述浓缩液中加入1 mL磷酸及100 mL乙酸锌溶液,混匀,放置15 min,并不时振摇。然后加5g硅藻土,稍加振摇后,用布氏漏斗抽滤,用少量水洗涤滤垫。将合并滤液移入500 mL分液漏斗内,用少量的水洗涤抽滤瓶,合并滤液和洗液。用1 mol/L的氢氧化钠溶液将滤液的pH调整至约7。
加入10g氯化钠及100 mL二氯甲烷于上述分液漏斗中,激烈振荡5min,静置分层。将下层二氯甲烷层通过无水硫酸钠柱脱水,滤入300 mL的烧瓶中。在水相中再加入100 mL二氯甲烷,同上操作一次。用少量二氯甲烷洗涤无水硫酸钠柱,合并二氯甲烷提取液和洗液。将提取液在40℃的旋转蒸发器上浓缩至近干,最后用氮气流吹干。准确加入5 mL正己烷以溶解残渣,溶液供气相色谱测定。
3.4.3 测定
3.4.3.1 气相色谱条件
a)色谱柱:石英毛细管柱,DB-5,50 m×0.32 mm(内径),膜厚1.0um,或相当者;
b)载气:氮气,纯度≥99.99% , 5.0 mL/min;
c)辅助气:氮气,纯度≥99.99% , 25 mL/min ;
d)氢气:3.5 mL/min;
e)空气:100 mL/min;
f)色谱柱温度:程序升温,200℃保持1 min,以10℃/min速度升至275℃,保持10 min;
g)进样口温度:250℃;
h)检测器温度:300℃;
i)进样量:2 uL。
3.4.3.2 气相色谱测定
根据样液中被测农药含量情况,选定峰高相近的标准工作溶液。标准工作溶液和样液中农药的响应值均应在仪器检测的线性范围内。对标准工作液与样液应等体积参插进样测定,在上述色谱条件下,三唑醇保留时间约为10.3 min。
必要时,用气相色谱-质谱法进行确证试验。
3.4.4 确证
3.4.4.1 气相色谱-质谱条件
a)色谱柱:石英毛细管柱,DB-5,50 m×0.32 mm(内径),1.0 um(膜厚);
b)载气:氦气,纯度≥99.999 % ,1 mL/min;
c)色谱柱温度:程序升温,200℃保持1 min,以10℃/min速度升至295℃,保持10 min;
d)进样口温度:250℃;
e)色谱-质谱接口温度:280℃;
f)进样量:1 I.L;
g)进样方式:无分流,2 min后开阀;
h)电离能量:70 eV;
i)电离方式:El;
j)电子倍增器电压:自动调谐值加200 V ;
k)测定方式:扫描方式或离子监测方式;
1)扫描范围:50~300 amu;
监测离子(m/z):168、128、112;
m)溶剂延迟:6 min。
3.4.4.2 气相色谱-质谱确证
对3.4.2中最后所得的样液及标准液均按3.4.4.1规定的条件进行测定。如果样液中与标准溶液相同的保留时间有监测离子峰出现,则对其进行质谱确证。
3.4.5 空白试验
除不称取试样外,均按上述测定步骤进行。
3.5 结果计算和表述
用色谱数据处理机或按式(2)计算试样中三唑醇的残留含量:
式中:X—试样中三唑醇残留含量,mg/kg ;
h—样液中三唑醇的色谱峰高,mm;
hs—标准工作液中三唑醇的色谱峰高,mm;
c—标准工作液中三唑醇的浓度,ug/mL;
V—样液最终定容体积,mL;
m—最终样液所代表的试样量,g。
注:计算结果需将空白值扣除。
4 测定低限、回收率
4.1 测定低限
本方法测定低限为0. 05 mg/kg。
4.2 回收率
大米中三唑醇的添加浓度和回收率实验数据:
0.05 mg/kg时,回收率为97.5%;
0.20 mg/kg时,回收率为96.8%;
1.00 mg/kg时,回收率为96.6%。
文章来源:《食品化妆品检验卷农药残留检测方法上》
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