鱼类是水生食物链的重要环节，也是水体中重要的经济动物。鱼类毒性试验在研究水污染及水环境质量中占有重要地位。通过鱼类急性毒性试验可以评价受试物对水生生物可能产生的影响，以短期暴露效应表明受试物的毒害性。因此在人为控制的条件下，所进行的各种鱼类毒性试验，不仅可用于化学品毒性测定，水体污染程度检测、废水及其处理效果检查，而且也可为制定水质标准、评价水环境质量和管理废水排放提供科学依据。

1．受试物及必备资料

对于化学受试物，要求以下必备资料：

水溶解度 在水中和光中的稳定性

蒸汽压 pKa值

结构式 正辛醇一水的分配系数

纯度 快速生物降解试验结果

水溶液中的定量分析方法

对于环境样品，采集样品时应将采样瓶充满水样不留顶上空间，样品采集后立即进行试验。如果样品采集后6h之内不能进行试验，则必须将水样在0-4℃下保存，废水稀释浓度可用体积百分比表示。

2．仪器设备

①溶解氧测定仪。

②水硬度计。

③温度控制仪。

④pH计。

⑤分析天平。

⑥试验容器或装置：化学惰性材料制成的水族箱或水槽，规格一致，体积适宜。如使用流水试验装置，应具有控温、充气、流速控制等功能。

⑦抄网：尼龙或其他化学惰性材料制成。对照组和试验组容器分用。

3．受试生物种或材料

可选用一个或多个鱼种，根据需要自行选择。但建议结合相应的标准来确定鱼种：如全年可得、易于饲养、试验方便、相关的经济、生物或生态因素等。试验用鱼应健康，无明显畸形。还应考虑来源可靠、稳定。建议受试物为化学品时采用表5-3-4中的推荐鱼种；受试物为环境样品时，除可采用上述推荐鱼种外，亦可采用当地具有代表性的鱼种。如白鲢(Hypophthamichthysmolitrix),鳙鱼（Aristichthysnobilis)，草鱼（Ctenopharyngodonidellus)，鲤鱼（Cyprinuscarpio）等。

用其他淡水鱼、海洋及半咸水鱼做试验时，试验条件，特别是关于稀释水用量、水质及温度应做相应的改变，并提出相应的试验条件。

4．试验程序

准备

(1)供试鱼的驯养

①供试鱼用于试验之前，必须在实验室至少暂养12d。临试验前，应在符合下列条件的环境中至少驯养7d:

水：与试验用稀释水水质相同；

光：每天12-16h光照；

温度：与试验鱼种相适宜；

溶解氧浓度：高于空气饱和值的80%;

喂养：每周三次或每天投食，至试验开始前24h为止。

②驯养开始48h后，记录死亡率，并按下列标准处理：

7d内死亡率小于5%，可用于试验；死亡率在5％-10％之间，继续驯养7d死亡率超过10%，该组鱼全部不能使用。

(2）试验用水

使用高质量的自然水或标准稀释水，也可以使用饮用水（必要时应除氯）。水的总硬度为10-250mg/L（以CaCO3计），pH为6.0-8.5。

(3）标准稀释水的配制

配制标准稀释水，所用试剂必须是分析纯，用全玻璃蒸馏水或去离子水配制。

①氯化钙溶液：将11.76gCaC12．2H2O溶解于水中，稀释至1L。

②硫酸镁溶液：将4.93gMgSO4·7H2O溶解于水中，稀释至1L。

③碳酸氢钠溶液：将2.59gNaHCO3溶解于水中，稀释至1L。

④氯化钾溶液：将0.23gKC1溶解于水中，稀释至1L。

蒸馏水或去离子水的电导率应≤l0μS/cm。

将这四种溶液各25m1加以混合并用水稀释至1L。溶液中钙离子和镁离子的总和是2.5mmol/L。Ca:Mg的比例为4：1,Na:K比为10：1。
稀释用水需经曝气直到氧饱和为止，储存备用。使用时不必再曝气。

(4）试验溶液

①将受试物贮备液稀释成一定浓度的受试物溶液。低水溶性物质的贮备液可以通过超声分散或其他适合的物理方法配制，必要时可以使用对鱼毒性低的有机溶剂、乳化剂和分散剂来助溶。使用这些物质时应加设助溶剂对照组，其助溶剂含量应为试验组使用助溶剂的最高浓度，且不得超过100mg/L或0.1ml/L。

②不需调节试验溶液的pH。如果加入受试物后水箱内水的pH有明显变化，建议加入前，调节受试物贮备液的pH，使其接近水箱内水的pH。调节贮备液的pH时不能使受试物浓度明显改变，或发生化学反应或沉淀。最好使用HCl和NaOH来调节。

(5）暴露条件

时间：96h。

承载量：静态和半静态试验系统最大承载量为Log鱼/L，流水式试验系统承载量可高一些。

光照：每天12-16h。

温度：与试验鱼种相适宜（见表5-3-4),温控范围±2℃，对于较严格的实验温控±1℃范围。

溶解氧：不低于空气饱和值的60%.曝气时不能使受试物明显受损。

不喂食，并避免会改变鱼行为的干扰。

试验操作

在试验之前，应根据受试物的化学稳定性确定采用的试验方法，即静态、半静态和流水式试验，从而选定需用的容器和装置。

（1)预试验

用以确定正式试验所需浓度范围，可选择较大范围的浓度系列，如1000、100、10、1、0.lmg/L。每个浓度组放入五条鱼，可用静态方式进行，不设平行组，试验持续48-96h。每日至少两次记录各容器内的死鱼数，并及时取出死鱼。

如果一次预试验结果无法确定正式试验所需的浓度范围，应另选一浓度范围再次进行预试验。

(2)正式试验

根据预试验得出的结果，在包括使鱼全部死亡的最低浓度和96h鱼类全部存活的最高浓度之间至少应设置五个浓度组，并以几何级数排布。浓度间隔系数应≤2.2。
每个试验浓度组应至少设三个平行，每一系列设一个空白对照。如使用了助溶剂，应增设溶剂对照，其浓度与试剂中的最高溶剂浓度相同。每一浓度组和对照组至少使用七尾鱼，条件允许的情况下，建议使用10尾鱼。

试验溶液调节至相应温度后，从驯养鱼群中随机取出鱼并随机迅速放入各试验容器中。转移期间处理不当的鱼均应弃除。同一试验，所有试验用鱼应在30min内分组完毕。

在24h、48h、72h和96h后检查受试鱼的状况。如果没有任何肉眼可见的运动，如鳃的扇动、碰触尾柄后无反应等，即可判断该鱼已死亡。观察并记录死鱼数目后，将死鱼从容器中取出。应在试验开始后3h或6h观察各处理组鱼的状况，并记录试验鱼的异常行为（如鱼体侧翻、失去平衡，游泳能力和呼吸功能减弱，色素沉积等）。

试验开始和结束时要测定pH值、溶解氧和温度。试验期间，每天至少测定一次。

至少在试验开始和结束时，测定试验容器中试验液的受试物浓度。

应记录所观察到的亚致死效应。

(3）极限试验

在进行鱼类毒性测定时，可以进行浓度为l00mg/L的极限试验。如极限试验结果表明LC50>100mg/L。可直接给出试验结果及评价：LC50>100mg/L，属于低毒。极限试验至少使用七尾鱼，与对照组使用的鱼数目相等。

二项式理论表明：使用10尾鱼，无一死亡，那么LC50>100mg/L的概率为99.9%;使用7-9尾鱼，无一死亡，那么LC50>100mg/L的概率至少为99%。
如果试验鱼发生死亡，则应按本方法前述试验操作（1)、(2)的试验程序进行试验。

5．质量保证与质量控制

①试验结束时，对照组鱼死亡率不得超过10%。

②试验期间，试验溶液的溶解氧含量应＞60％的空气饱和值。

③试验期间，受试物实测浓度不能低于设置浓度的80％。如果试验期间受试物实测浓度与设置浓度相差超过20%，则以实测受试物浓度来表达试验结果。

④试验期间，尽可能维持恒定条件。如果有必要，应使用半静态或流水式试验方式。

6．数据与报告

（1)数据处理

①以暴露浓度为横坐标，死亡率为纵坐标，在计算机或对数一概率坐标纸上，绘制暴露浓度对死亡率的曲线。用直线内插法或常用统计程序计算出24h、48h、72h、96h的LC50值，并计算95％的置信限。

②如果试验数据不适于计算LC50。可用不引起死亡的最高浓度和引起100％死亡的最低死亡浓度估算LC50的近似值，即这两个浓度的几何平均值。

(2）结果评价

鱼类急性毒性可按以下标准分级。

(3）编写报告

试验报告应包括：试验名称、目的、试验原理、试验的准确起止日期，以及：

1)受试物质：对于化学品，其化学名称、其他名称（商品名等）、化学式、成分、制造厂商、批号、纯度等级和理化性质等；对于废水或环境样品，应给出其来源、采样时间、地点、保存条件等。

2）试验用鱼：试验用鱼名称、学名、品系、大小、来源、驯（养）化情况、试验开始时的鱼龄、规格等。

3）试验条件：

①使用的试验方式，如静态、半静态或流水式，以及曝气、承载量等。

②试验溶液配制方法，如果使用助溶剂，应注明使用浓度及对受试物的毒性影响。

③稀释用水，来源、类型、水质（pH、硬度、碱度和温度等）。

④试验容器，质地、规格、体积及清洗情况。

⑤试验溶液，体积、浓度、每个浓度组平行数，试验液更换情况、更换方法、流动情况，以及受试物的加入系统、流速、清洗周期及方法。受试物的规定浓度，实测浓度及测定日期。最好用表格列出试验期间试验温度、pH值、溶解氧的全部实测值。

⑥每一试验浓度的用鱼数目。

⑦光照，如光的性质、强度、周期。

4）试验报告：

①无死亡发生（EC0）的最高浓度。

②导致100％死亡（EC100）的最低浓度。

③24h、48h、72h、96h时的每个浓度的累计死亡率。

④24h、48h、72h、96h的LC50，及其95％的置信限。

⑤浓度一死亡率曲线图。

⑥确定LC50值的统计学方法。

⑦对照组的死亡率。

⑧试验期间，可能会影响试验结果的隐患。

⑨鱼的异常反应。

5）结果讨论。