北京普天同创生物科技有限公司
3.4 测定步骤
3.4.1 提取
称取约20 g试样(精确至0.1g)于均质瓶内,加入100 mL甲醇, 1000r/min均质4 min后,将均质瓶移入离心机,4000r/min离心10 min。
3.4.2 净化
将阴离子交换柱置于中性氧化铝柱下,用移液管移20 mL提取的上清液于氧化铝柱中,使提取液经中性氧化铝和阴离子交换柱流入烧杯。用10 mL甲醇清洗中性氧化铝柱的柱壁。移去氧化铝柱和烧杯,将25 mL的比色管置于阴离子交换柱的下方,用两份10 mL的 0.6%乙酸甲醇溶液洗脱二氯二甲吡啶酚,洗提液流速:1 mL/min。用甲醇定容并混匀。
3.4.3 甲基化
用移液管移取定容的洗提液5 mL于试管(3.3.6)内,试管置于70℃水浴内,通以氮气流吹干。取出试管,加入0.2 mL甲醇水溶液(8:2),微温使残渣溶解,冷却至室温。加1 mL重氮甲烷试剂,拧上旋盖,将试管置于70℃水浴中保温反应2 min。反应时,试管内的液面和水浴面持平。取出试管,冷却至室温。拧去旋盖,仅使管底部接触水面,直至乙醚蒸除。于除去乙醚后的试管内加5 mL去离子水和1.00 mL提取用的硝基氯苯正己烷溶液(3.2.7),加盖,在混和器上混和1 min。取出试管,4000r/min离心3 min。所制成的上层正己烷样液供气相色谱测定。
3.4.4 测定
3.4.4.1 色谱条件
a.色谱柱:玻璃柱,2 m×2 mm(内径),填充物为10%(m/m)DC-200硅油涂子Chromosorb WHP载体(80~100目);
b.氮气:纯度≥99.99%, 60 mL/min ;
c.柱温:170℃;
d.进样Q温度:200℃;
e.检测器温度:300℃。
3.4.4.2 色谱测定
将样液(如有必要,可多加提取用的硝基氯苯正己烷溶液,作进一步稀释)注入气相色谱柱,进样量2 uL。在上述色谱条件下二氯二甲吡啶甲醚出峰保留时间约为2 min, 2,4-二硝基氯苯出峰保留时间约为4 min。
3.4.5 标准曲线的绘制
分别取二氯二甲吡啶酚标准工作溶液0,0.1,0.2,0.4,0.8,1.6 mL于各个试管(3.3.6)内,按上述步骤(3.4.3~3.4.4)进行,但略去“定容的洗提液5 mL”。以所得各浓度二氯二甲吡啶甲醚色谱峰高和内标峰高之比,对应实际标准溶液的浓度年g/mL)绘制标准曲线。
3.4.6 回收系数R
称取三份19.9~20.1g(精确至0.1g)不含二氯二甲吡啶酚的试样,分别加入相当于0.0,0.01和0.05 ug/g的二氯二甲吡啶酚中间标准溶液(Ⅱ)(分别为0.0,0.2和1 mL)。按3.4.1~3.4.4条操作,并计算出平均回收系数R。
3.4.7 空白试验:除不称取试样外,均按上述测定步骤(3.4.1~3.4.4)进行。
3.4.8 结果计算和表述
按下式计算试样中二氯二甲吡啶酚的含量:
式中:X—鸡肉中二氯二甲吡啶酚含量,mg/kg;
R—平均回收率;
c—由标准曲线查得最终样液中二氯二甲吡啶酚的含量,ug/mL ;
V—最终样液的体积,mL ;
m—最终样液所代表的样品量,g;
二氯二甲吡啶酚含量亦可由色谱数据处理机直接求得。
注;计算结果需将空白值扣除。
4 测定低限、回收率
4.1 测定低限
本方法测定低限为0.005 mg/kg。
4.2 回收率
回收率实验数据:
二氯二甲吡啶酚添加浓度在0.005~0.025mg/kg范围内,回收率为65.4%~86.2%。
文章来源:《食品化妆品检验卷无机元素和放射元素及其他检测方法》
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