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1.3测定方法与不确定度来源分析
1.3.1测定方法
操作流程如图1所示:
图1 操作流程
测定步骤如下:
(1)试验准备
单标线吸量管、容量瓶的清洗,比色皿、分度吸量管的清洗及灭菌,培养基、pH7.8磷酸盐缓冲液的准备,半无菌间的紫外消毒等。
(2)预试验
确定最佳的试验条件:调整试验菌的浓度、使用量、抗生素溶液浓度、培养基等,使在试验条件下能得到满意的剂量-反应关系和适宜的测定浊度巨检验标准中规定在35℃~37℃培养3h~4h后(本例培养4h),使用微生物比浊法测定仪测定的吸光度在0.3~0.7,且剂距为2的相邻剂量间的吸光度差值不小于0.1]。
(3)供试品、标准品溶液的制备
①供试品溶液的制备:供试品硫酸小诺霉素溶液为注射剂,精密量取3mL(VT取样=3mL)~100mL“容量瓶(VT=100mL)中,加灭菌水至刻度,摇匀。精密量取上述供试品的灭菌水溶液2mL~100mL容量瓶中,加pH7.8磷酸盐缓冲液至刻度摇匀。再分别精密量取上述缓冲溶液5mL~100mL和200mL容量瓶中,分别加pH7.8磷酸盐缓冲液稀释至刻度,摇匀,即得高、低浓度(理论浓度)分别为1.0u/mL,0.5u/mL的供试品溶液。
②标准品溶液的制备:精密称取小诺霉素标准品约0.039g(Ws=0.03916g),置25mL容量瓶中(Vs=25mL),加灭菌水至.刻度,摇匀。然后按供试品溶液制法,得到高、低浓度(理论浓度)分别为1.0u/mL、0.5u/mL的标准品溶液。
注:制备供试品、标准品的高低浓度溶液所用的2mL、5mL单标线吸量管和100mL、200mL容量瓶的容量和等级是相同的,并且体积在初始的计算公式(本案例未列出)中被约分了。此处认为它们的体积分散性也被抵消了。
(4)含试验菌液体培养基的制备
临用前,取试验菌悬液适量,加入抗生素检定培养基Ⅲ号中,混合均匀。立即使用,以防止试验菌在培养前生长。
(5)加样
用微量移液器精密吸取供试品和标准品溶液高低浓度溶液各1 mL,按拉丁方阵排列顺序放入特制的比色皿中,再用分度吸量管精密吸取含菌培养基9mL,放入比色皿中,摇匀。采取二剂量法,每一浓度组加4个比色皿,共16个比色皿一起放入微生物比浊法测定仪的培养箱中。
(6)空白管和阳性对照管的制备
①空白管:取一支比色皿,精密加入1mL缓冲液和9mL不带菌培养基,摇匀。
②阳性对照:取一支比色皿,精密加入1mL缓冲液和9mL带菌培养基,摇匀。
(7)培养
按照4×4拉丁方阵排列顺序(见图2),将所有比色皿放入微生物比浊法测定仪中培养3h~4h(本例培养4h),使测定的吸光度值在0.3~0.7。
(8)测量
本例开始实验40min后,每隔10min测量一次吸光度,共培养4h,共测量20组数据。测定效价时,选取一个培养时间点的一组吸光度原始数据(本例选取4.1.5.1.3小节表1中第3时间点的16个吸光度数据)计算效价,其抗生素高低浓度溶液的吸光度值均应在0.3~0.7。正常检验只测量一个样品试液,本例为了评定测量重复性不确定度分量,重复测量10次(10个平行样),数据见4.2中表2。
A是阳性K是阴性
图2 拉丁方阵排列
(9)结果的可靠性检验及效价计算
①可靠性检验
偏离平行要求p>0.05,p指可靠性检验的置信概率。
可信限率FL≤7%。(按药典规定:“除另有规定外,本法的可信限率不得大于5%”,小诺霉素属于“另有规定”类。)
本次测量,可靠性检验符合要求(详细检验过程与不确定度评定无关,此处从略)。
②效价计算
按式(1)计算效价:
式中:
Y—硫酸小诺霉素注射液的效价(百分比),%;
WS—标准品取样量,39.16mg;
VT取样—供试品取样量,3mL;
Vs—标准品稀释体积,25mL;
VT—供试品稀释体积,100mL;
R—供试品与标准品的效价比值,无量纲;
574—小诺霉素标准品效价,u/mg;
60—供试品规格,mg;
2—平均装量,mL;
1000—效价u到mg的换算因子,u/mg;
的计算结果,mL/mg。
式(1)中:
其中:
式中:D—标液和试液的理论浓度比值。
式中:I—为标液和试液相同剂量溶液的高低浓度理论比值的对数。
按下文4.1.5.1.3小节表1中第3个时间点的数据计算(以下同),有:
式中:T1、T2、S1、S2分别为通过可靠性检验的4个吸光度值的累加和,T代表供试品,S代表标准品,下标1为低浓度,下标2为高浓度。以下同。
将式(3)~式(6)代入式(2),得:
注:1g—以10为底常用对数,即1og10,若有A=10x,则1gA=x;
antilg—反常用对数,antilgA=10x,即是求解真数10x的值。
将式(1)代入数值,得:
以一次检验结果的Y值为测得值。
文章来源:《食品药品检测测量不确定度评定实例》
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