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(一)细胞毒性法
TNF细胞毒性测定的基础是它对某些细胞株的直接杀伤作用,如小鼠成纤维细胞系1929 , WEHI 164、小鼠结缔组织细胞L-K等,TNF能使敏感靶细胞发生形态上的病变,直至死亡。细胞毒性法正是通过靶细胞被杀伤的程度来测定TNF活性。
染色法是一种经典方法,操作简便,直观易行。常用的染料有中性红、结晶紫、锥虫蓝、氨基黑蓝、奈酚蓝和吉姆萨染料等。以中性红为例,它可使活细胞染上颜色,再用脱色液将染料脱出,通过测定其A值来间接反映出TNF的生物活性。
【材料】
1.待检血清;
2.对数生长期的L929细胞;
3.全培基(RPMI 1640+10%小牛血清+1% HEPES+青霉素100U/ml、链霉素100 ug/ml);
4. 0.5%中性红染液;
5.脱色液0.lmol/L Na2P04和90%乙醇定量混合;
6. 96孔细胞培养板,酶标仪。
【方法】
1.用全培基调整L929细胞浓度为2x105/ml,
2.将待测样品加到96孔板中,每孔100ul,每个样品做3个复孔,依次以1:1,1:2,1:4...1:64倍比稀释,然后每孔加入L929细胞悬液100ul,同时设正常细胞组(不加TNF样品)和空白对照组。
3. 37℃,5% CO2环境中培养16~24小时,用生理盐水洗3次,每孔加中性红染液200ul, 37℃培养1小时。
4.用生理盐水洗3次,晾干,每孔加脱色液150ul,5分钟后,以酶标仪测定各孔A530 nm值,并计算各孔细胞死亡率及样品中TNF的活性。一般将50%细胞死亡的TNF最大稀释倍数定为1 U/ml。
(二)核素法
【原理】
放射性核素具有灵敏度高的优点。根据实验原理的不同,又可分为释放法和掺入法两种。前者是用3H-TdR或Na251CrO4预先标记靶细胞,经TNF作用后,细胞遭受损伤溶解,其中的核素标记物被释放出来,因此可用上清液中3H或51Cr的放射活性来指示细胞被杀伤的程度。后一方法是根据TNF作用后,存活靶细胞对l4C标记的氨基酸,3H-TdR或125Ⅰ标记脱氧尿嘧啶的掺入量来反映存活细胞的数量,进而计算出TNF的细胞毒活性。下面以3H释放法为例简述之。
【材料】
1.待测样品;
2.长成单层的L929细胞;
3.全培基同前;
4. 3H-TdR370kBq/ml, 0.5% SDS;
5.液闪检测仪。
【方法】
1.在25 cm2的细胞培养瓶中培养L929细胞,使其长成单层。
2.加入3H-TdR使其终浓度达37kBq/ml,继续培养3天后用预温细胞培养液洗3次。
3.加入TNF待测样品,37℃,5% CO2环境培养18小时,离心(1000r/min,5分钟),测上清中cpm值,计算特异性杀伤能力(即细胞毒作用),同时设最大释放组(将标记好的L929细胞培养瓶中加入0.5% SDS,作用30分钟)和自发释放组(标记好的L929细胞瓶)。
【结果】
最新研究发现,经TNF作用的细胞会出现凋亡现象,DNA被降解成碎片,据此可在TNF作用后收集存活细胞,用玻璃纤维滤膜进行负压过滤,由于死亡细胞的DNA都已被降解成碎片,经洗涤穿过滤膜去除,因此所测得的放射性剂量对应于存活细胞中完整DNA分子上所标记的3H-TdR,它反映了存活的靶细胞数目,具有更高的信噪比和灵敏度。
(三)MTT比色法
【材料】
1.待测样品;
2. L929细胞;全培基同前;
3.放线菌素D(100ug/ ml);
4. 0.01 mol/L PBS缓冲液(pH 7.2);
5. MTT应用液(5 mg/ml);
6. 20% SDS+50% DMSO(溶解液);
7. 96孔细胞培养板,酶标仪。
【方法】
1.将L929细胞配成1.5x105/ml的细胞悬液,按100微升/孔分别加入到96孔培养板中。
2.在上述各孔中加入等量不同稀释度的TNF待测样品,再加入放线菌素D使其终浓度达1ug/ml。
3. 37℃,5% C02环境中孵育24小时后弃上清液,用0.Olmol/L PBS洗2次。
4.于每孔中加5mg/ml的MTT应用液10微升/孔,再加培养液100微升/孔。
5. 37℃,5% CO2环境中继续培养3~6小时后,加溶解液100微升/孔,吹打使颗粒充分溶解,用酶标仪测A值,检测波长570nm,参考波长630nm,实验中应设不加TNF样品的对照孔。细胞毒活性检测法还有荧光法、电子颗粒计数法、集落形成抑制法、乳酸脱氢酶法和氨基己糖苷酶法等,但都或多或少存在局限故不再详述。
【结果】
另外,还可采用放射受体分析法检测大批量样本,来源于人组织细胞淋巴瘤U-937细胞的表面含有大量TNF受体,可与TNF特异高效地结合。通过被检样品中TNF分子与放射性核素标记的TNF对U-937细胞上TNF受体的竞争性结合,即可测定样品中TNF含量。本法信噪比及特异性均高,且快速简便,但灵敏度略低,适合大批量临床标本的检测。
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