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细胞凋亡的生物化学检测法

发布时间:2017-03-09 00:00 作者:中国标准物质网 阅读量:1096

凋亡的细胞在发生凋亡时,内源性核酸内切酶活化和表达,此酶可将DNA在核小体连接部位酶解,使DNA断裂成200bp倍数大小不等的片段,DNA条带呈现梯状(ladder)排列,这一现象可以用琼脂糖凝胶电泳检测。DNA片段化是凋亡晚期现象,凋亡早期不适用此法检测,此方法虽简便,但敏感度较低,需1x106以上凋亡晚期细胞。

(一)琼脂糖凝胶电泳检测梯状DNA条带

【材料】

1.待检细胞(5×106/ml)。

2.试剂 细胞裂解液:50mM Tris-HCI(pH7.5),20mM EDTA,l%(W/V) NP-40。

RNA酶A:终浓度0.5ug/ul。

蛋白酶K:终浓度0.5ug/ul。

100bp DNA分子量标准品。

【方法】

1.将5×105,待检细胞用PBS洗一次,置无菌的1.5m1 Eppendorf管中,4℃,2000r/min离心5分钟,弃上清液。

2.加入50ul细胞裂解液,用移液管混匀。2000r/min离心5分钟,取上清液。再加入50ul细胞裂解液,用移液管混匀。2000r/min离心5分钟,取上清液。

3.加RNA酶A, 56℃孵育120分钟。加蛋白酶K,37℃孵育120分钟。

4.加1/2体积10M醋酸铵,2.5倍的乙醇沉淀DNA。20 OOOr/min离心15分钟,DNA沉淀用TE溶解。

5. DNA样品与溴酚蓝加样液混合后,加样到含0.5 ug/ml溴化乙锭的1.0%琼脂糖凝胶中。同时用100bp DNA分子量作标准品。

6.电泳,凝胶成像系统观察,摄影。

【结果】

凋亡细胞出现梯状DNA条带(图3-2)。

(二)末端脱氧核糖核苷酸转移酶标记法检测细胞凋亡

细胞凋亡产生DNA片段,末端脱氧核糖核苷酸转移酶标记法(terminal deoxynucleotidyl transferase mediated dUTP nick end labeling assay, TUNEL)利用末端脱氧核苷酸转移酶的作用,对凋亡细胞片段化DNA的3'-OH游离末端进行高效特异性标记FITC-dUTP,然后使用荧光显微镜直接进行观察。对掺入的FIX或dUTP,也可以用过氧化物酶标记的抗体进行检测,与底物显色后使用光学显微镜进行观察。

【材料】

1.通透液含0.1% Triton X-100的0.1%枸橼酸钠溶液。

2.末端脱氧核苷酸转移酶及底物。

3.多聚甲醛(Paraformaldehyde )、蛋白酶K(Proteinase K)。

【方法】

1.标本处理

(1)当使用培养细胞时:收集细胞,PBS进行清洗,载玻片上风干。风干后的细胞使用新配制4% Paraformaldehyde/PBS(pH 7.4)室温固定15~30分钟,PBS清洗20~30分钟。

(2)当使用冻结组织切片时:采取的新鲜组织经快速冷冻后切片,平铺于赖氨酸包被的载玻片上,使用新配制的4% paraformaldehyde/PBS(pH 7.4)室温固定15~30分钟,然后使用PBS清洗20~30分钟。

(3)当使用石蜡包埋组织切片时:将切片进行脱蜡处理,再用Proteinase K (10~20ug/ml)处理15分钟后,用PBS清洗20~30分钟。

2.室温下,使用0.3% H2O2甲醇处理细胞15~30分钟,或使用3% H2O2水溶液处理石蜡切片5分钟,封闭内源性过氧化物酶,只有在需要辣根过氧化物酶显色时本步骤必须进行。使用荧光观察实验结果时,可以省略本操作。

3. PBS清洗细胞,加通透液含0.1% Triton X-100的0.1%枸橼酸钠溶液100ul,冰上反应2~5分钟,PBS清洗。

4.把预先配制好冰上放置的反应液(含末端脱氧核昔酸转移酶+FITC-dUTP/dUTP)加至载玻片上(为防止反应液干燥,可在反应液上加盖玻片),37℃,在保湿箱中反应60~90分钟。用PBS清洗。

5.使用流式细胞仪或荧光显微镜观察细胞染色情况。
如使用光学显微镜观察细胞染色情况时,请继续进行以下操作。

6.加Anti-FITC HRP Conjugate/Anti-地高辛dUTP HRP Conjugate,在37℃,反应30分钟(为防止反应液干燥,可在反应液上加盖玻片),用PBS清洗3次,每次5分钟。

7.室温下,使用DAB进行10~15分钟的显色,然后用蒸馏水清洗停止反应。

8.用3%甲基绿(methyl Green)染核,经脱水封片后用光学显微镜观察。

阳性对照:将通透液处理过的标本用重组的DNase (3 U/ml~3000U/ml )作用10分钟,诱导DNA链断裂。

【结果】

凋亡细胞的核在甲基绿的基础上,显棕黄色。

(三)Annexin V/PI检测细胞凋亡

细胞凋亡时,胞膜的磷脂酞丝氨酸外翻,Annexin V是钙离子依赖的磷脂结合蛋白,对磷脂酞丝氨酸有很高的结合力,在细胞膜外可检测到荧光标记的Annexin V。活细胞胞膜完整,碘化丙啶( propidium iodide, PI)不能染核。死细胞和凋亡细胞胞膜不完整,PI可以透过染核。此法敏感,通过流式细胞术可检测出单个凋亡细胞,缺点是无法区分出晚期凋亡细胞和死亡细胞,有些细胞在凋亡早期无胞膜的磷脂酞丝氨酸外翻,也无法用此方法检测。

【材料】

结合缓冲液,FITC Annexin V等来自所购试剂盒,PI:终浓度3um。

【方法】

1.用冷PBS洗细胞2次,调整细胞浓度至1×106/ml,悬浮于lx结合缓冲液。

2.吸取100 ul细胞(1×105)至5m1培养管。

3.加5 u1 of FITC Annexin V和5ul PI。

4.轻微混悬细胞,暗处室温孵育15分钟。

5.每管加400ul 1x结合缓冲液。进行流式细胞分析。

实验应包含以下对照:

1.没有染色的细胞。

2.只染FITC Annexin V的细胞,无PI。

3.只染PI的细胞,无FITC Annexin V。

【结果】

当细胞(Annexin V+/PI-)时,表示早期凋亡;当(Annexin V+/PI+)时,表示晚期凋亡或死亡;当(Annexin V-/PI-)时,代表活细胞(图3-3 )。

(四)检测亚二倍体DNA峰判定凋亡

在进行细胞周期检测时,正常细胞显示二倍体峰(2n),分裂细胞显示四倍体峰(4n),凋亡细胞有亚二倍体峰,可以将细胞核用荧光染料染色,用流式细胞仪进行分析。

【材料】

1.缓冲液含1%牛血清清蛋白(BSA) [fraction Ⅳ,无蛋白酶(protease-free);0.01%(w/v)叠氮钠(sodiumazide]的0.1 M PBS缓冲液,4℃保存。

2. RNase A[终浓度40 ug/ml,用含1%牛血清白蛋白(fraction Ⅳ,无蛋白酶;0.01%(w/v)叠氮钠的)0.1M PBS缓冲液配制],Pl(终浓度50 ug/ml )现用现配。

【方法】

1.将凋亡细胞及作为对照的非凋亡细胞于4℃下,1000r/min离心5分钟。用3ml预冷缓冲液洗一遍,离心弃上清液。

2.加500ul缓冲液轻轻混悬细胞,再加3倍体积冰上预冷的70%乙醇,混悬,4℃放置1小时。

3. 4℃,1000r/min离心5分钟,去上清液。用3 ml预冷缓冲液洗一遍,离心去上清液。

4.用200~500ul含RNase A和PI的缓冲液悬浮细胞,室温避光孵育30分钟。

5.流式细胞仪分析。

【结果】

凋亡细胞有亚二倍体峰(图3-4)。

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