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6.1.5 选择性液体计数培养基的半定量测试方法
6.1.5.1 培养基的制备
将培养基分装试管,每管10mL。
6.1.5.2 工作菌悬液的制备
按照6.1.3.2中要求进行。
6.1.5.3 接种
6.1.5.3.1 目标菌的接种
在装有待测培养基的试管中接种10CFU~100CFU的目标菌,接种总量为1mL,同时接种两个平行管,混匀。同时将1mL菌悬液(与试管接种同一稀释度)倾注平板,接种两个平板,作接种量计数用。按标准方法中规定的培养时间和温度进行培养。
6.1.5.3.2 非目标菌的接种
在装有待测培养基的试管中接种1000CFU-5000CFU的非目标菌,接种总量为1mL,同时接种两个平行管,混匀。同时将1mL菌悬液(比试管接种小10~100倍稀释度)倾注平板,接种两个平板,作接种量计数用。按标准方法中规定的培养时间和温度进行培养。
6.1.5.4 结果解释
用目测的浊度值(如0~2)评估培养基:
—0表示无混浊;
—1表示很轻微的混浊;
—2表示严重的混浊。
并记录小导管收集气体的体积比。
目标菌的浊度值应为2,产气应为1/3或以上;非目标菌的浊度值应为0或1,无产气现象。
注:有时可以观察到微生物生长后聚集成细胞团,沉积在试管或瓶子底部,发生这种情况时,小心振荡试管后再进行观察。
6.1.6 悬浮培养基和运输培养基的定量测试方法
6.1.6.1 培养基的制备
将培养基分装试管,每管10mL(有特殊要求的可选用5mL)。
6.1.6.2 目标菌工作菌悬液的制备
按照6.1.3.2中要求进行。
6.1.6.3 接种
在装有待测培养基的试管中接种100CFU~1000CFU的目标菌,同时接种两个平行管,混匀后,立即吸取1mL待测培养基混合液,选用相应的培养基倾注平板,每管待测培养基接种一个平板。按标准方法中规定的培养时间和温度培养后,进行菌落计数。
剩余己接种菌液的待测培养基置20℃~25℃放置45min后;再吸取ImL倾注平板,每管培养基接种一个平板,按标准方法中规定的培养时间和温度培养后,进行菌落计数。
6.1.6.4 结果观察与解释
待测培养基中的菌落数变化应在±50%内。
6.1.7 Mueller~Hinton血琼脂的纸片扩散测试方法(定性测试方法)
6.1.7.1 平板的制备与保存
倾注融化的培养基到平皿中,使之在平皿中形成一个厚度为4mm~5mm的琼脂层。倾注后将平板放到水平平面,使琼脂冷却凝固。凝固后的培养基应立即使用或存放于暗处和(或)5℃±3℃冰箱的密封袋中,在有效期内使用。使用前应可将平板置35℃温箱中或置室温层流橱中对琼脂表面进行干燥,培养基表面应湿润,但不能有水滴,培养皿也不应有水滴。
6.1.7.2 质控菌株的复苏
将质控菌株接种到血平板上,按标准方法中规定的培养时间和温度进行培养。检查纯度合格后,用于质控工作菌悬液的制备。
6.1.7.3 质控菌工作菌悬液的制备
将纯度满意的质控菌株培养物悬浮于TSB肉汤中,并调整浊度为0.5麦氏标准(1×108CFU/mL~2×108CFU/mL)。
6.1.7.4 接种
用涂布法将质控工作菌悬液接种于MH平板上,并贴上相应的抗生素纸片(每平板最多贴6片),将平板翻转后按标准方法中规定的培养时间和温度进行培养。调整菌悬液浊度与接种所有平板间的时间间隔不要超过15min。
6.1.7.5 结果观察与解释
在无反射黑色背景下,观察有无抑菌环。
文章来源:《食品安全国家标准汇编检验方法(二)》
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